一、小鼠感染模型構建實驗設計核心要素
明確研究目標
基礎機制研究（如免疫逃逸）→ 需高分辨率檢測（單細胞測序、多色流式）
治療評價（如抗生素）→ 需設定明確的療效終點（生存率、組織載量降低倍數）
小鼠選擇策略
6-8周齡（標準實驗） vs. 老齡鼠（模擬年齡相關免疫衰退）
常規(guī)研究：C57BL/6（Th1傾向）、BALB/c（Th2傾向）
免疫缺陷模型：SCID、NOD-scid、NSG（適合人源化感染研究）
品系：
年齡：
性別：雌性可能對某些病原體更敏感（如HSV-2）
病原體關鍵參數
臨床分離株（如SARS-CoV-2 Delta變異株） vs. 實驗室適應株（如鼠適應流感病毒PR8）
保存條件：病毒需-80℃分裝避免反復凍融，部分細菌需活菌傳代保持毒力
二、小鼠感染模型構建精準感染技術（以呼吸道VS全身感染為例）
1. 呼吸道感染（以流感病毒為例）
麻醉優(yōu)化：
使用酮胺/甲苯噻嗪混合麻醉（比異fu烷更持久），防止鼻內接種時嗆咳接種體積：
鼻內滴注：≤50μL（避免窒息）
氣溶膠：使用Glas-Col系統(tǒng)，控制粒徑1-3μm直達肺泡
劑量控制：
預實驗測試100-10^4 PFU梯度，選擇導致20%體重下降的劑量（非致死性模型）
2. 全身性感染（以敗血癥模型為例）
CLP（盲腸結扎穿孔）：
16G針頭穿孔2次模擬重度敗血癥
術后需皮下補液（1mL生理鹽水）
細菌靜脈接種：
金黃色葡tao球菌（1×10^7 CFU/尾靜脈）→ 監(jiān)測血培養(yǎng)陽性時間
三、動態(tài)監(jiān)測方案設計
| 時間點 | 檢測指標 | 技術方法 |
|---|---|---|
| 0-24h | 病原體早期定植 | 活體成像（熒光標記病原體） |
| 3dpi | 炎癥峰值 | Luminex多因子檢測 + 肺組織H&E染色 |
| 7dpi | 免疫記憶形成 | 抗原特異性Tetramer檢測 |
特殊模型需求：
持續(xù)性感染（如HBV）：需使用 hydrodynamic injection 遞送HBV基因組
慢性炎癥模型：反復低劑量感染（如每周1次鼻內接種支原體）
四、對照設置進階策略
遺傳背景對照：
用IFNAR1-/-小鼠驗證I型干擾素的作用
微生物組干擾控制：
抗生素預處理后定植單一菌群（如人源糞菌移植）
治療對照：
設置亞治療劑量組（如0.5×MIC抗生素）觀察反彈現象
五、關鍵問題解決方案
感染不均一性：
采用混勻組織勻漿后梯度稀釋培養(yǎng)（非單點取樣）免疫過度激活干擾：
使用TLR4突變小鼠（C3H/HeJ）研究內毒素非依賴途徑模型人源化不足：
人ACE2轉基因小鼠或造血系統(tǒng)人源化小鼠（HIV研究）
六、前沿技術整合
單細胞感染動力學：
使用REPLICON-seq技術追蹤單個細胞內病原體復制局部微環(huán)境分析：
激光捕獲顯微切割（LCM）分離感染灶進行空間轉錄組分析人工智能預測：
訓練深度學習模型根據早期臨床評分預測疾病結局
